home *** CD-ROM | disk | FTP | other *** search
/ Mission 3 / Mission 3.zip / Mission 3.iso / demovers / review / demo_db / daten / abstract.rev next >
Text File  |  1995-06-15  |  12KB  |  125 lines

  1. 124
  2.  
  3.  
  4.  
  5.  
  6.  
  7.  
  8.  
  9.  
  10.  
  11.  
  12.  
  13.  
  14.  
  15.  
  16.  
  17.  
  18.  
  19.  
  20. Intrauterine infusion of enriched bovine trophoblast protein-1 complex (bTP-1) resulted in extension of interoestrous intervals and corpus luteum function in cyclic cattle. Conceptus proteins were obtained by culture of Day 17-18 conceptuses for 72 h. from the first (n = 28), second (n = 26) and third (n = 19) 24 h of conceptus incubations were utilized. A highly enriched preparation of bTP-1 was obtained by a combination of ammonium ate precipitation, ion-exchange chromatography, and h.p.l.c. gel filtration. Degree of purity of the final preparation was confirmed by gel electrophoresis and immunoblotting with antiserum to ovine trophoblast protein-1. Jersey cattle (3 per group) received intrauterine infusions, twice daily from Day 15. 5 to 21.0, of bovine serum albumin, the entire array of bovine conceptus secretory proteins (bCSP) from the 3 days of conceptus culture, or bTP-1. Infusions were via a catheter into the uterine horn ipsilateral to the corpus luteum. Oestrous cycle length in bTP-1-treated cows (26.1 +/- 1.3 days) was greater than for cows given BSA (19.5 +/- 1.3 days) or bCSP (21.5 +/- 1. 3 days). Similarly, progesterone concentrations in serum remained elevated for a longer period of time for bTP-1-treated cows than for cows treated with BSA or bCSP. Residual variance associated with vena cava concentrations of PGF-2 alpha at Days 19-21 after oestrus (which included the variance between 15-min periods within cows) was reduced in cows treated with bTP-1 as compared to other groups. Lack of a bCSP effect may have been due to low amounts of bTP-1 in conceptus-conditioned medium from cultures of greater than 24 h. None the less, purified bTP-1 was effective in extending luteal function and appears to be the antiluteolytic agent of early pregnancy.
  21.  
  22.  
  23.  
  24.  
  25.  
  26.  
  27.  
  28.  
  29.  
  30.  
  31.  
  32.  
  33.  
  34.  
  35.  
  36.  
  37.  
  38.  
  39.  
  40.  
  41.  
  42.  
  43.  
  44.  
  45.  
  46.  
  47.  
  48.  
  49.  
  50.  
  51. The cytoplasmic and outer membranes of gram-negative bacteria can be isolated from spheroplasts, and separated on sucrose density gradients. Lysis of spheroplasts causes extensive membrane fragmentation and since the characteristics of the fragments obtained by different lysis procedures need not be identical, the influence of the disruption method on membrane composition has been examined. Spheroplasts of Escherichia coli J5 were lysed by osmotic shock, which did not significantly separate the cytoplasmic and outer membranes, but resulted in mixed membrane
  52. Outer membrane proteins are synthesized by cytoplasmic membrane- bound polysomes, and inserted at insertion sites which cover about 10% of the total outer membrane when cells grow with a generation time of 1 h. A membrane fraction enriched in outer ane insertion regions was isolated and partly characterized. The rat at which newly inserted proteins are transferred from such insertion regions into the rest of the outer membrane was found to be very fast; the new protein content of insertion regions and that of the remaining outer membrane equilibrate completely
  53. The insertion of newly synthesized proteins into the outer membrane of Escherichia coli has been examined. The results show that there is no precurser pool of outer membrane proteins in the cytoplasmic membrane because first, the incorporation of a (35S) methionine pulse into outer membrane proteins completely parallels its incorporation into cytoplasmic membrane proteins, and second, under optimal isolation conditions, no outer membrane proteins are found in the cytoplasmic membrane, even when the membranes are analysed after being labeled for only 15 s. The
  54. The insertion of newly synthesized lipoprotein molecules into the cell wall of Escherichia coli was studied topographically by immunoelectron microscopy. Lipoprotein was briefly induced with isopropyl-beta-D-thiogalactopyranoside in cells carrying lac-lpp on a low-copy-number plasmid in an E. coli lpp host. Specific antibodies bound to the newly inserted lipoprotein molecules, which were exposed at the cell surface after treatment of the cells with Tris-EDTA, were detected with a protein A-gold probe. The average distribution of the gold particles over the cell
  55. A complex containing lipopolysaccharides, phospholipids and proteine separated from the medium by gelfiltration on Sephadex G 200 or by centrifugation. Electron microscopy revealed that this material is released as vesicles and membrane fragements. To determine the origin of these fragments, they were compared to outer and cytoplasmic membranes with respect to keto- deoxyoctulosonic acid, phospholipid, and protein content, phospholipid composition, fatty acid composition, protein distribution on sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gels,
  56. This paper describes a highly efficient procedure for the quantitative conversion of Escherichia coli cells to spheroplasts utilizing 100- to 1000-fold less lysozyme than in the most efficient procedures used to date. The resulting spheroplasts have intact outer and inner membranes and are fully viable on agar plates. The spheroplasting procedure is a refinement of earlier procedures and enables regulation of the translocation of minute amounts of lysozyme into the periplasmic space of E. coli cells, based on a Ca2+ pretreatment, an EDTA incubation, and a
  57. EDTA-induced outer membrane losses from whole cells of wild-type Escherichia coli (O111:B4) and several lipopolysaccharide (LPS) mutants derived from E. coli K-12 D21 were analyzed. EDTA treatment induced losses of LPS (up to 40%), outer membrane proteins OmpA, OmpF/C, and lipoprotein, periplasmic proteins, and phosphatidylethanolamine. The extent of these releases was strain specific. Successively more EDTA was necessary to induce these losses from strains containing LPS with increasing polysaccharide chain length. An additional heat shock immediately following the
  58. We have examined whether the outer membrane fragments released by normally growing Escherichia coli contain relatively old or new outer membrane. Double-label experiments show that after incorporation of radioactive leucine into E. coli protein, there is a preferential release of outer membrane material which contains a high percentage of newly labeled protein. This implies that outer membrane fragments are preferentially released from those regions where newly synthesized proteins are inserted into the outer membrane. We estimate that these insertion regions
  59. The lipoprotein content of the outer-membrane medium vesicles, which are released from Escherichia coli during normal growth, was compared to the lipoprotein content of the corresponding cellular outer membranes. It was found that the medium vesicles contained only 35% free lipoprotein and almost none of the bound lipoprotein when compared with cellular outer membranes. Medium vesicles also had reduced amounts of protein II and a protein V (Mr = 16 000), while they contained large amounts of pore- forming proteins I and lamB. A mechanism is proposed in which
  60. The restricted access of lysozyme to the murein layer of exponential phase Escherichia coli is enhanced considerably by osmotic shock. When cells suspended in Tris/EDTA/sucrose are diluted 11-fold in water or 10 mM EDTA in the presence of lysozyme, their susceptibility to lysozyme increases by a factor of 50--100, for both Escherichia coli JC411 and W3110, grown to the early exponential phase in unsuppleneted or supplemented minimal media, and in Brain Heart Infusion. Since an 11-fold dilution causes lysis of lysozyme spheroplasts, the effects of a
  61.  
  62. Lysozyme fails to penetrate through the outer membrane of stationary phase cells of Escherichia coli when it is simply added to suspensions of plasmolyzed cells. Lysozyme penetrates the outer membrane only when these cells are exposed to a mild osmotic shock in the presence of EDTA and lysozyme. In the presence of Mg2+, the outer membrane is stabilized sufficiently so that there is no lysozyme penetration during osmotic shock. If Mg2+ is added after an osmotic shock has been used to cause lysozyme to penetrate a destabilized outer membrane, the outer
  63.  
  64. Natural human interferon alpha 2 (IFN-alpha 2) was isolated from a preparation of partially purified human leucocyte IFN by monoclonal-antibody immunoaffinity chromatography. The purified protein had a specific activity of 1.5 x 10(8) i.u./mg; it was estimated to constitute 10-20% of the total antiviral activity of leucocyte IFN. N-Terminal amino-acid-sequence analysis identified the subspecies IFN-alpha 2b and/or IFN-alpha 2c, whereas IFN- alpha 2a was not detectable. The structure of natural IFN-alpha 2 was found to differ from that of its recombinant (Escherichia
  65.  
  66. We studied the association of the alpha subunit of the (IFN- alpha-receptor) to other receptor components in the human H-929 and U-266 myeloma cell lines. Immunoprecipitation performed with the IFNaR3 mAb showed that two proteins with molecular masses of 205 and 145 kDa are co-precipitated with the alpha subunit. These complexes may not bind IFN-alpha as shown by studies using the heterobifunctional cross-linking reagent Denny-Jaffe and by partial cleavage of the homobifunctional cross-linker dithio succinimidyl propionate. These studies also provided evidence
  67. Human interferon alpha 2 (IFN-alpha 2) was expressed in Spodoptera frugiperda Sf9 insect cells using the baculovirus expression system. The protein purified by immunoaffinity chromatography exhibited biological activity identical to that of leukocyte-derived 'natural' IFN-alpha 2. However, the protein was found to be heterogeneously glycosylated, partially truncated by proteolysis and partially lacking a disulfide bridge. The major product was shown to be O-glycosylated at the same position as natural human IFN-alpha 2. Enzymatic cleavage, reverse-phase HPLC
  68. The binding sites for human interferon-alpha (IFN-alpha) have been characterized on human lymphoblastoid, melanoma, rhabdomyosarcoma, and cervical carcinoma cells. Crosslinking of iodinated-recombinant DNA-derived IFN-alpha-Con1, an analog of the known IFN-alpha subtypes, to the cell surface with disuccinimidyl suberate yielded four IFN-receptor complexes of 118, 138, 159, and 260 kD on all cell lines that specifically bind IFN-alpha. Since IFN-alpha exists in solution as monomers, dimers, and trimers, and the three lower molecular weight IFN-
  69. Of the large number of human alpha interferon genes identified, only one, Hu-IFN-alpha H, contains potential asparagine-linked glycosylation sites. With the use of a new vector that permits convenient expression, site-specific mutation, and DNA sequencing Hu-IFN-alpha H was expressed in Escherichia coli. The bacterial product which is not glycosylated is fully active demonstrating that the carbohydrate on this species is not required for antiviral activity.
  70.  
  71.  
  72.  
  73.  
  74.  
  75.  
  76.  
  77.  
  78.  
  79.  
  80.  
  81.  
  82.  
  83.  
  84.  
  85.  
  86.  
  87.  
  88. Vorschrift : Reaktionsmix enthält 0.1 M P-Puffer, pH 7, oder Tris-HCl, pH 7.8 0.2-0.35 mg Protein, 6 M Harnstoff (wenn zugesetzt) in 0.9 ml Gesamtvolumen. Starten mit 0.1 ml einer 0.01 M 5.5'-Dithiobis(2- nitrobenzoesäure) und Absorptionsmessung bei 412 nm. Extinktionskoeffizient für L-Cystein liegt bei 13.600 M-1cm-1 (lt. Ellmann 1959) mit und ohne Harnstoff.
  89.  
  90.  
  91.  
  92.  
  93.  
  94.  
  95.  
  96.  
  97.  
  98.  
  99.  
  100.  
  101.  
  102.  
  103.  
  104.  
  105.  
  106. ... IFN alpha and beta, but not IFN-tau (!), were toxic to cells at high concentrations (>= 10^4 U/ml). Thus, the mechanism by which type I IFN's inhibit cell proliferation differs from that associated with their toxic effects (!)....
  107.  
  108.  
  109.  
  110.  
  111.  
  112.  
  113.  
  114.  
  115.  
  116.  
  117.  
  118.  
  119.  
  120.  
  121.  
  122.  
  123.  
  124.  
  125.